Общий анализ крови алгоритм выполнения

Техника проведения общего анализа крови

Общий анализ крови алгоритм выполнения

Предыдущая1234567Следующая

2.1. Техника забора крови и подготовки
образца крови для исследования

Шаг А. Подготовка растворов, пробирок и другого инструментария (табл. 1).

Таблица 1. Необходимые подготовительные процедуры при проведении общего анализа крови

Определяемый показатель Посуда Раствор, его объем и состав
СОЭ Химическая пробирка и капилляр Панченкова 5 %-ный раствор C6H5O7Na3∙5H2O набрать в капилляр Панченкова до метки 0,75 и затем выдуть в химическую пробирку
Гемоглобин Химическая пробирка 4 мл трансформирующего раствора (ацетоциангидрин – 0,5 мг, калий железосинеродистый – 0,2 г, натрия гидрокарбонат – 1 г, дистиллированная вода – до 1 л)
Количество эритроцитов Химическая пробирка 4 мл изотонического раствора хлорида натрия
Количество лейкоцитов Химическая пробирка 0,4 мл 3–5 %-ной уксусной кислоты (уксусная кислота разрушает эритроциты, визуализируя тем самым лейкоциты)
Количество тромбоцитов Химическая пробирка 4 мл 1 %-ного раствора оксалата аммония (раствор разрушает эритроциты, визуализируя тромбоциты)

Шаг Б.

Забор крови из мякоти пальца (капиллярная кровь).

Тщательно протирают кожу мякоти пальца ватным шариком, смоченным спиртом, делают укол стерильным копьем до упора.

Первую выступившую каплю крови вытирают сухим ватным шариком; из следующих капель, выступающих из мест укола при легком надавливании, быстро набирают необходимое количество крови: для СОЭ, для определения гемоглобина, для определения числа эритроцитов, для определения числа лейкоцитов, для исследования лейкоцитарной формулы, для определения тромбоцитов.

Забор крови из вены (венозная кровь).

Накладывают жгут на 8–10 см выше локтевого сгиба. Обрабатывают кожу локтевого сгиба над обнаруженной по характерному вздутию вены шариком, смоченным спиртом или другим антисептиком. В вену вводят иглу с подсоединенным шприцем и набирают необходимое для анализа количество крови.

Кровь осторожно (не вспенивая, так как при этом происходит разрушение эритроцитов и других клеток крови) выпускают в пробирку с порошком ЭДТА или другим антикоагулянтом.

Пробирку закрывают пробкой и тщательно перемешивают кровь для распределения антикоагулянта, опрокидывая пробирку сначала пробкой вниз, затем пробкой вверх.

В настоящее время используются специальные системы для забора крови и ее одновременного помещения в одноразовую пластиковую пробирку с антикоагулянтом. Предпочтение исследования венозной крови связано с возможностью одновременного получения объема крови, необходимого для разных анализов.

Шаг В. Внесение крови в подготовленную лабораторную посуду

Кровь вносят в подготовленную посуду специальным капилляром объемом 20 мкл согласно приведенным в табл. 2 разведениям в указанном выше порядке.

Набирают ее капилляром до метки 0,02 из мест укола в мякоти пальца или пробирки с венозной кровью, кончик капилляра промокают фильтровальной бумагой, выдувают кровь в соответствующую пробирку и промывают капилляр (путем заполнения капилляра и выдувания раствора) в реактиве той же пробирки для максимально полного внесения образца крови.

Таблица 2. Объемы крови для определения показателей общего анализа крови

Определяемый показатель Объем диагностического раствора Объем крови
СОЭ 1/4 часть капилляра Панченкова (до отметки 0,75), раствор вносится в химическую пробирку Полный капилляр Панченкова до отметки 0, кровь вносится в химическую пробирку с раствором цитрата калия (соотношение кровь : цитрат = 4 : 1)
Гемоглобин 4 мл 0,02 мл
Количество эритроцитов 4 мл 0,02 мл (разведение 1 : 200)
Количество лейкоцитов 0,4 мл 0,02 мл (разведение 1 : 20)
Количество тромбоцитов 4 мл 0,02 мл (разведение 1 : 200)

Затем для последующего определения лейкоцитарной формулы каплю крови наносят на край обезжиренного предметного стекла и быстро готовят тонкий мазок с помощью шлифованного стекла, краем которого быстрым движением продвигают каплю крови по предметному стеклу.

Таким образом, после выполнения шага В для исследования образца крови имеются 4 пробирки со смесью крови и соответствующего реактива и приготовленный тонкий мазок крови на предметном стекле, необходимые для дальнейших диагностических процедур с использованием специального оборудования (табл. 3).

Таблица 3. Оборудование и методы определения основных показателей общего анализа крови

Определяемый показатель Необходимое оборудование Метод
СОЭ Аппарат Панченкова (штатив и капилляры – 1 на каждый образец крови) Седиментационный с последующим визуальным учетом
Гемоглобин Фотоэлектроколориметр Биохимический с ФЭК-учетом результатов
Количество эритроцитов Камера Горяева, световой микроскоп Микроскопический
Количество лейкоцитов Камера Горяева, световой микроскоп Микроскопический
Количество тромбоцитов Камера горяева, световой микроскоп Микроскопический

2.2. Техника определения показателей
общего анализа крови

Предыдущая1234567Следующая .

Источник: https://mylektsii.ru/9-28142.html

Методика исследований

Общий анализ крови алгоритм выполнения

< Предыдущая СОДЕРЖАНИЕ Следующая >

Перейти к загрузке файла

Забор крови, с последующим её исследованием производился у мужчин в возрасте от 20-ти до 35-ти лет, до и после физической нагрузки. В исследовании приняла участие группа из тридцати трёх человек, каждый из которой, после взятия пробы до физической нагрузки, проходил стандартную тренировку в течение часа. В таблице 3 сведены типы и продолжительность упражнений, которым подвергались все испытуемые.Таблица 3 – типы физической нагрузки, применяемой в исследовании
Тип физической нагрузкиПродолжительность, минТемп выполнения
Бег15Средний
Комплекс упражнений15Ускоренный
Спарринг30Средний

Тренировка включала в себя 15 минут бега в нормальном темпе (один тридцатиметровый круг в минуту); выполнение комплекса упражнений (подтягивания, отжимания от пола, приседания) в течение 15 минут в ускоренном темпе (20 подтягиваний в минуту, 50 приседаний в минуту, 30 отжиманий в минуту); 30 минутный спарринг в нормальном темпе (20-25 бросков в минуту). По окончанию тренировки вновь бралась проба такого же объёма, у тех же испытуемых, что и до тренировки.

Техника проведения общего анализа крови

Основные этапы выполнения общего анализа крови:

1 взятие материала;

2 приготовление мазков крови;

3 проведение анализов на гематологическом анализаторе;

4 фиксация мазков крови;

5 окраска мазков крови;

6 подсчёт лейкоцитарной формулы.

Взятие материала. Кровь для исследования получили путём прокола четвёртого пальца левой руки обследуемого слева от срединной линии на некотором расстоянии от ногтя. В зависимости от толщины кожи глубина прокола составляет 2-3 мм. Обработанная кожа пальца высыхает несколько секунд.

Цель этого «высыхания» – исключить растекание крови по пальцу, а также гемолитического воздействия антисептика на эритроциты. Скарификатор одноразового использования плотно зажимается между указательным и большим пальцами правой руки; производится прокол.

Прокол произвели перпендикулярно рисунку кожных покровов пальца, так как в этом случае происходит повреждение нескольких капилляров, ход которых совпадает с ходом линий кожного рисунка. Учитываем, что разрез произведённый параллельно кожным линиям, спадается, что затрудняет забор крови. Первую, выступившую каплю крови удалили ватным тампоном, а последующие были взяты на исследование.

Взятую кровь поместили в пронумерованные и обработанные раствором антикоагулянта. Трилоном-Б, пластиковые микрокюветы. На следующем рисунке показаны одноразовые пластиковые микрокюветы, более удобные и безопасные в использовании, чем стеклянные пробирки.

Все манипуляции связанные с забором крови проводились используя стерильные комплекты инструментов для взятия крови (капилляры Панченкова, предметные стёкла, скарификаторы и микрокюветы).

Для каждого обследуемого использовалась индивидуальная пара перчаток и стерильных ватных укладок. Все манипуляции проводились в соответствии с требованиями приказа №165 МЗ РБ от 25.11.

2002 г «О методах стерилизации и дезинфекции в медицинских учреждениях» [21].

Рисунок 1 – Микрокюветы с раствором антикоагулянта

Приготовление мазков крови. Для изготовления мазка крови использовались тщательно обезжиренные предметные стёкла. Мазок крови готовился шлифованным стеклом с идеально ровным краем, ширина которого была приблизительно на 2-3 мм уже предметного стекла.

К куполу свеже выпущенной из прокола капли было сделано прикосновение предметным стеклом на расстоянии 1,5-2 см от его края, не касаясь кожи в месте прокола. Размер капли на стекле не менее 2-3 мм в диаметре. Шлифованным стеклом, приставленным к предметному под углом 45°, быстрым движением справа налево был сделан мазок.

Критерием правильности выполненного мазка является его полупрозрачность и желтоватый цвет. Техника приготовления мазка крови представлена на следующем рисунке.

Рисунок 2 – Техника приготовления мазка крови

Проведение анализов на гематологическом анализаторе. Для исследований использовался гематологический анализатор SISMYX-500. Взятую кровь в миниёмкастях тщательно перемешали и поместили в загрузочную часть аппарата.

Предварительно была проведена калибровка данного аппарата, которая заключалась в проведении полного анализа микрокюветы с дистиллированной водой. Определение параметров исследуемой крови протекает в автономном режиме, без непосредственного участия человека.

По завершению цикла исследования сняли выданные аппаратом результаты [22].

Изображение аппарата SISMYX-500, и момента отбора пробы для анализа, представлены на рисунке 3.

Фиксация мазков крови. Данный этап предохраняет форменные элементы от содержащейся в красителях воды, под влиянием которой в не фиксированных мазках происходит гемолиз эритроцитов и изменяется морфология лейкоцитов.

Фиксатор также вызывает коагуляцию белков и тем самым закрепляет препарат на стекле. В качестве фиксирующей жидкости использовали раствор эозинметиленового синего по Май-Грюнвальду. Высушенные мазки опускались в широкогорлую банку с фиксатором на 3-5 минут. Далее пинцетом мазки были извлечены и высушены на воздухе.

Рисунок 3 – Гематологический анализатор SISMYX-500

Окраска мазков крови. Фиксированные сухие мазки поместили в контейнер, который опустили в кювету с рабочим раствором красителя и выдержали в нём экспозицию в 30 минут.

Затем, контейнер был перенесён в кювету с водопроводной водой, а затем в вертикальный штатив для сушки. В качестве красящего раствора был использован краситель по прописи Романовского-Гимзы.

В состав красителя входят: азур-2 (смесь равных количеств азура-1 и метиленового синего) и эозин.

Критериями правильности данной окраски являются розово-оранжевые гранулы эозинофилов, светло-розовый цвет эритроцитов, нейтрофильная зернистость фиолетового цвета.

Подсчёт лейкоцитарной формулы производят с помощью иммерсионной системы микроскопа с увеличением Ч630. Для работы используется специальное иммерсионное масло, каплю которого наносят на препарат. Удобный обзор препарата настраивают с помощью микро- и макровинтов. Для регистрации клеток при подсчёте лейкоцитарной формулы использовался счётчик лабораторный СЛ-1.

Это простейший арифмометр снабжённый клавишами, обозначенными буквами для подсчёта соответствующих видов лейкоцитов, изображён на рисунке 4.

Рисунок 4 – Счётчик лабораторный СЛ-1

Подсчёт лейкоцитов производился в тонкой части мазка, где эритроциты располагаются одиночно. Препарат просматривают по зигзагообразной линии («линии Меандра») в количестве 3-5 полей зрения. Когда сосчитано 100 клеток, счётчик издаёт характерный сигнал, что означает окончание подсчёта лейкограммы данного препарата. Подсчитывались только целые, не разрушенные клетки.

Статистическая обработка результатов исследования

Для оценки влияния физической нагрузки на состояние показателей периферической крови использовались результаты общего анализа крови до и после физической нагрузки.

В ходе исследования нами были вычислены среднее арифметическое, стандартное отклонение, стандартная ошибка, коэффициент вариации по продуктивности и устойчивости внимания, а также по показателям темпа выполнения.

Средняя арифметическая вычисляется по формуле:

, (4)

где Xi – значение признака, варианта;

n – число значений.

Стандартное отклонение:

, (5)

где x2 – сумма квадратов центральных отклонений, т. е. квадратов разностей между каждым значением и средней арифметической;

n – 1 – число степеней свободы, равное числу объектов в группе без одного.

Ошибка стандартного отклонения:

(6)

где — дисперсия;

n — объём выборки.

Коэффициента вариации:

, (7)

где у – стандартное отклонение;

м – средняя арифметическая.

В результате обработки полученного материала, был проведён статистический анализ, построены графики зависимости показателей концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, от воздействующего на них фактора физической нагрузки, а также таблицы результатов дисперсионного анализа, для каждого из исследуемых показателей.

Статистическая обработка результатов исследований выполнена с использованием прикладных программ MS Excel 2007 и Statistica for Windows 6.0. Оценка достоверности различий осуществлялась на основе критерия Фишера. Влияние физической нагрузки на показатели крови оценено методом однофакторного дисперсионного [23].

Источник: https://infopedia.su/3x3f93.html

БолиНет
Добавить комментарий

< Предыдущая СОДЕРЖАНИЕ Следующая >

Перейти к загрузке файла

Влияние фактора физической нагрузки на показатели периферической крови оценивались по показателям концентрация гемоглобина, количество эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, полученным для обследованной группы до и после физической нагрузки. В таблице 4 представлены результаты статистической обработки полученных данных до выполнения физической нагрузки.Таблица 4 – Состояние периферической крови до нагрузки
Показатели донагрузкиПоказатели распределения
MSDXminXmaxpt-критерийCV, %
Гемоглобин, г/л151,2±2,16,6134165

Источник: https://studbooks.net/1147399/meditsina/metodika_issledovaniy

Алгоритм проведения общего анализа крови

Общий анализ крови алгоритм выполнения
Работа добавлена на сайт samzan.ru: 2015-07-05

Билет №13

1.  АЛГОРИТМ ПРОВЕДЕНИЯ ОБЩЕГО АНАЛИЗА КРОВИ

1. Подготовка  рабочего места для исследования.

      На двоих студентов  для забора       крови  должны быть подготовлены:

Реактивы: 

  1.  спирт этиловый  70%;
  2.  5% раствор цитрата натрия;   
  3.  физраствор,             
  4.  трансформирующий раствор;  
  5.  5% раствор уксусной кислоты.

Оборудование:  вата;         стерильные скарификаторы; стерильные              капилляры Панченкова; капилляры       Сали; предметные стекла с лункой;              предметные стекла; шлифованное стекло;      штатив с  пробирками;              штатив       Панченкова;  градуированные пипетки;      резиновые груши;              емкости с       дезраствором для использованной ваты,      капилляров,              скарификаторов.

2. Подготовительная работа

  1.  Промывают капилляр Панченкова  5% раствором цитрата натрия.
  2.  Набирают  цитрат натрия в капилляр Панченкова до метки «75»    и выдувают

    его в лунку предметного стекла (или в пробирку).

  1.  Разливают реактивы по пробиркам: в одну пробирку вносят 4мл  физраствора; в другую – 5мл трансформирующего раствора; в третью – 0,4 мл 5% раствора уксусной кислоты.

3. Забор крови из пальца

  1.  Делают прокол кожи.
  2.  После удаления первой капли  делают 2 мазка.
  3.  Набирают из пальца кровь в капилляр Панченкова  выше  метки «0» («К») – почти полный капилляр.
  4.  Спускают кровь из капилляра Панченкова  до метки О «К»  на предметное

    стекло – она будет использована для определения содержания гемоглобина,

    подсчета количества эритроцитов и лейкоцитов.

  1.  Остальную кровь из капилляра Панченкова  спускают в цитрат натрия и

    тщательно перемешивают кровь с цитратом.

  1.  Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в физраствор – для подсчета эритроцитов.
  2.  2-3 промывают капилляр Сали физраствором.
  3.  Перемешивают кровь с физраствором.
  4.  Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови  и вносят её в трансформирующий раствор – для определения концентрации гемоглобина.
  5.  2-3 промывают капилляр Сали трансформирующим раствором.
  6.  Тщательно перемешивают содержимое пробирки и замечают  время – 20

     минут.

  1.  Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови  и вносят её в  раствор уксусной кислоты – для подсчета количества лейкоцитов.
  2.  2-3 промывают капилляр Сали  раствором уксусной кислоты.
  3.  Тщательно перемешивают содержимое пробирки.
  4.  Набирают смесь крови с цитратом в капилляр Панченкова без пузырьков воздуха до метки «0» и ставят капилляр в штатив Панченкова на 1 час.

4. Проведение исследований

  1.  Через 20 минут колориметрируют  смесь крови с трансформирующим раствором  на ФЭКе  или  МИНИГЕМе.
  2.  При использовании  ФЭКа  концентрацию гемоглобина определяют по калибровочному графику.
  3.  Готовят к работе  счетную камеру  – притирают к камере Горяева покровное стекло так, чтобы появились радужные кольца.
  4.  Тщательно встряхивают  пробирки с кровью, разведенной физраствором и уксусной кислотой.
  5.  Заполняют одну сетку камеры Горяева  смесью крови и физраствора (для подсчета  эритроцитов), а другую – кровью с уксусной кислотой (для подсчета лейкоцитов).
  6.  Оставляют камеру в горизонтальном положении на 1 минуту для оседания клеток крови.
  7.  Готовят микроскоп к работе: настраивают свет, конденсор опускают.
  8.  Подсчитывают под микроскопом  (окуляр 10х или 15, объектив 8х)  в одной сетке камеры Горяева  эритроциты в пяти больших разграфленных квадратах по диагонали сетки, а затем, в другой сетке счетной камеры – лейкоциты в 100 больших не разграфленных квадратах.
  9.  По формулам рассчитывают  количество эритроцитов и лейкоцитов в 1л крови
  10.  Через 1 час снимают  показания СОЭ.

2. Определите количество белка в моче пиррогаллоловым методом. Принцип метода, реактивы, ход определения,  расчет.

Ответ:
Принцип: При взаимодействии белка с красителем пирогаллоловым красным образуется окрашенный комплекс, интенсивность поглощения которого на длине волны 600нм увеличивается с ростом концентрации белка в пробе.                                                  

Реактивы поставляются в наборе: раствор пирогаллолового красного и молибдата натрия в сукцинатном буфере, калибровочные растворы белка 1 г/л  и 0,2г/л.

Специальное оборудование: фотоэлектроколориметр или специальный фотометр МИКРОЛАБ-600 для определения концентрации белка.

Ход исследования. Приготовить пробы смешиванием компонентов в количестве, указанном в таблице 7.

Приготовление проб

КомпонентыХолостая пробаКалибровочная проба 1г/лОпытная проба
Образец            –              –          20 мкл
Калибровочный раствор 1,0 г/л            –              20мкл            –
Вода дистиллированная           20мкл               –            –
Реагент           1мл             1мл           1мл

После смешивания компонентов пробы инкубируют 15 минут при комнатной температуре. Окраска стабильна в течении 30 минут после завершения инкубирования. Измеряют оптическую плотность опытных проб и калибровочной пробы в кюветах на 1см при длине волны 600нм против холостой пробы.

Расчет ведут по формуле:

C=Dобразец   ,    где С – концентрация белка в пробе,

    Dстандарт               D – образец- оптическая плотность опытной пробы

                                      D – стандарт-оптическая плотность калибровочной пробы.

Если результат определения более 1,9г/л, следует развести исследуемый образец в 2 или более раза дистиллированной водой, повторить тест и результат умножить на степень разведения. Если концентрация белка менее 0,07г/л и требуется уточнение результата, повторить анализ с калибровочной пробой 0,2г/л при соотношении образец/реагент=1:10

3. У больного после приступа удушья выделилось небольшое количество слизистой мокроты.  

Исследование мокроты № 148
ФИО больного Антонов Г.В.
Физические свойства
Характер               слизистаяКоличество           скудноеЦвет                       стекловидныйконсистенция        вязкаяЗапах                                     -Слоистость                           -Включения           спирали                             Куршмана
Микроскопическое исследование
Эпителий цилиндрический         ++Эритроциты                                  -Лейкоциты                                    –  эозинофилы                                  +Макрофаги                                    -Опухолевые клетки                     –Эластические волокна:      простые                        –      коралловидные            –      обызвествленные        -Спирали Куршмана           +
Кристаллы Шарко-Лейдена        +Кристаллы гематоидина              -Кристаллы  холестерина             -Кристаллы жирных кислот         –Паразиты            -Грибы                  -Микобактерии туберкулеза    –        Флора                   –
  1.  Перечислите отклонения от нормы в анализе.
  2.  Патология, для которой  характерна такая картина
  3.  Признаки, указывающие на данную патологию

Ответ:

–  Бронхиальная астма.

–  Характеристика мокроты:

  1.  слизистый характер, стекловидная, вязкая;
  2.  при микроскопии обнаружены эозинофилы, эпителиальные клетки, спирали Куршмана, кристаллы Шарко-Лейдена.

Билет №14

2. Найдите в окрашенном препарате крови «бластные» клетки. Морфология «бластных» клеток. Картина крови при острых лейкозах.

Ответ:
-Бластные клетки – недифференцированные клетки.

По морфологическим, цитохимическим и иммунофенотипическим признакам бластные клетки могут быть отнесены к гранулоцитарному, лимфоидному или эритроидному ряду.

От других клеток крови и костного мозга бластные клетки отличаются строением ядра. Хроматин у них состоит из нитей равномерного калибра и окраски, благодаря чему структура ядра напоминает тонкое кружево. Другой характерный признак бластной клетки – наличие крупных ядрышек (2-5 на одну клетку).

Миелобластам и монобластам свойственны такие признаки, как азурофильные гранулы, палочки Ауэра , складчатость ядерной оболочки. 

Бластные клетки – наиболее “молодые” элементы крови.

-Картина крови и костного мозга
Для острого лейкоза типична триада признаков: лейкоцитоз, появление большого числа бластных клеток и лейкемический провал (в периферической крови присутствуют бласты и зрелые клетки белой крови, без промежуточных стадий созревания).

В начале острого лейкоза может отмечаться анемия, цветовой показатель равен 1 (нормохромная анемия) или 1,2–1,3 (гиперхромная анемия). Среди эритроцитов много макроцитов. Количество тромбоцитов снижено или нормально. При остром лейкозе костный мозг содержит десятки процентов бластных клеток.

Основным диагностическим признаком является однообразная картина костномозгового кроветворения. По мере прогрессирования острого лейкоза лейкозные клетки становятся более уродливыми.

3. Оцените микроскопическую картину кала:

Микроскопическое исследование кала № 74
Мышечные волокна непереваренныеПереваримаяклетчатка+++
Мышечные волокнапереваренные+Непереваримаяклетчатка+
СоединительнаятканьКрахмал+
НейтральныежирыЙодофильная флора+++
Жирные кислотыЯйца гельминтов
мыла+простейшие
  1.  Перечислите отклонения от нормы в анализе.
  2.  Патология, для которой  характерна такая картина
  3.  Признаки, указывающие на данную патологию

Ответ:

1. Отклонения от нормы:

  1.  переваримая клетчатка +++,
  2.  крахмал +,
  3.  йодофильная флора  +++ (в норме этих элементов в кале нет).

2. Бродильная диспепсия.

3. Наличие йодофильной флоры, перевар

Источник: http://samzan.ru/161001

Общий анализ крови: цель и техника проведения

Общий анализ крови алгоритм выполнения

Обследование пациента обычно начинается с опроса больного врачом на предмет определенных жалоб, что составляет субъективную оценку состояния пациента.

Для уточнения, подтверждения или опровержения полученных сведений проводится объективная оценка, основанная на данных лабораторной диагностики.

Результаты лабораторных тестов позволяют не только своевременно поставить точный диагноз, но и оценить качество проведенной терапии.

Общеклиническое исследование крови – один из важнейших диагностических методов, который отражает реакцию органов кроветворения на воздействие различных физиологических и патологических факторов.

Оно включает определение содержания гемоглобина, количества эритроцитов, вычисление цветового показателя, подсчет числа лейкоцитов, тромбоцитов, определение лейкоцитарной формулы и скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

Общий анализ крови является основой диагностики многих известных заболеваний. По изменению его показателей может быть установлен окончательный диагноз и назначено соответствующее лечение.

Общеклиническое исследование крови:

  • позволяет оценить функциональное состояние организма;
  • помогает определить природу патологического процесса (заболевания крови, воспалительный процесс, гнойно-септическое состояние, специфический иммунный процесс);
  • дает возможность провести диагностику анемии;
  • помогает оценить тяжесть течения и активность острого процесса, определить обострение хронического заболевания, а также развитие осложнений;
  • позволяет контролировать эффективность проводимой терапии;
  • помогает прогнозировать ход патологического процесса.

Но, чтобы получить точный и достоверный результат исследования, перед сдачей крови на исследование следует соблюдать определенные правила подготовки. Ведь на оцениваемые показатели кроме патологических факторов влияют:

  • физиологические и конституциональные особенности человека (пол, возраст, расовая принадлежность);
  • прием пищи перед сдачей биологического материала (голодание, злоупотребление жареным или сладким);
  • физическая и эмоциональная нагрузки;
  • природные изменения гормонального фона (фазы менструального цикла, беременность, менопауза);
  • погодные и климатические условия;
  • различные химические и физические факторы (лекарства, химические средства, ионизирующая радиация);
  • положение пациента в момент взятия материала.

Для того, чтобы сдать кровь для проведения общеклинического анализа специальная подготовка не нужно. Достаточно придерживаться общих требований – посетить отделение лаборатории в утренние часы и натощак.

Точность результатов исследования зависит не только от подготовки пациента к процедуре, но и от техники забора крови. Взятие крови из вены традиционным способом, то есть с помощью обычного шприца, приводит к следующим проблемам:

  • длительное время манипуляции;
  • контакт крови с окружающей средой;
  • свертывание крови в игле;
  • разрушение эритроцитов;
  • сложность соблюдения соотношения количества крови и реагента.

Также забор венозной крови с помощью шприца не исключает контакта медперсонала с биоматериалом пациента, а поэтому представляет опасность для здоровья.

Оптимальным решением для взятия венозной крови стали вакуумные системы, используемые в МЛ ДІЛА.

Кровь в вакутейнер набирается за счет вакуума в пробирке, а точно рассчитанное на этапе производства давление обеспечивает оптимальное соотношение количества крови к реагенту.

Преимущества использования вакутейнера:

  • во время забора материала полностью исключается контакт медицинского персонала с кровью пациента;
  • стандартизированный процесс забора крови и подготовки проб;
  • транспортировка и аналитическое исследование безопасно, так как пробирки герметичны, изготовлены из небьющихся материалов;
  • простая идентификация и маркировка проб по видам исследований, благодаря цветному кодированию крышек, что исключает перепутывание пробирок;
  • манипуляция забора крови выполняется быстро и почти безболезненно.

Расшифровка показателей общего анализа крови осуществляется в несколько этапов. Медицинская лаборатория ДІЛА оснащена современным оборудованием, на котором производится автоматическое определение основных параметров.

Результат выдается на бланке, в котором оцениваемые параметры указываются рядом с референсными нормами, принятыми в лаборатории.

Для верной оценки показателей необходимо обратиться к врачу, который сможет сопоставить полученные в лаборатории результаты с клинической картиной и сделать правильный вывод о состоянии пациента. 

Источник: https://dila.ua/rus/news/032018-zagalnyj-analiz-krovi.html

Забор крови для лабораторного анализа из пальца

Общий анализ крови алгоритм выполнения

Цель: диагностическая – взятие крови на общий клинический анализ: определение количественного и качественного состава форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определение количества гемоглобина в крови и скорости оседания эритроцитов (СОЭ), определение содержания в крови глюкозы, а также свертываемости крови и времени кровотечения.

Показание: по назначению врача.

Места прокола кожи: мочка уха. безымянный палец, пятка ножки новорожденного.

Приготовьте: стерильные: копье-скарификатор, ватные шарики, перчатки, кожный антисептик, 5% раствор йода, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить пациента о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приема лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

2. Усадите удобно пациента.

3. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком, наденьте перчатки.

4. Возьмите левой рукой IV палец левой руки пациента так, чтобы ваш первый палец располагался с тыльной поверхности кисти пациента, а остальные – с ладонной.

5. Обработайте место прокола двумя стерильными ватными шариками, смоченными кожным антисептиком и дайте ему высохнуть, иначе выступившая после прокола кровь растекается по пальцу.

6. Слегка сдавите ногтевую фалангу пальца пациента и держа копье- скарификатор перпендикулярно произведите прокол влево от срединной линии, немного отступя от ногтя.

7. Разрез должен располагаться поперек кожных линий пальца, ранка будет зиять, кровь из нее пойдет легко и обильно. Разрез, расположенный вдоль кожных линий, быстро спадает. Не следует делать прокол около самого ногтя, так как кровь затекает под него и набирать ее для исследования трудно,

8. Сотрите первую каплю крови стерильным сухим ватным шариком.

9. Для каждого исследования кровь набирают из новой капли.

10. После взятия крови место прокола обработайте 5% раствором йода.

11. Использованный инструментарий поместите в КБСУ.

Примечание:

– при ожогах и обморожениях кистей рук, у лиц с утолщенной и загрубевшей кожей на пальцах, кровь можно взять с мочки уха;

– у грудных детей кровь берут из большого пальца ноги или из пятки.

ЗАБОР КРОВИ ДЛЯ БИОХИМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ИЗ

ВЕНЫ

Цель: диагностическая.

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис, вирусный гепатит, СПИД.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: шприц однократного применения емкостью 10-20 мл. лоток, ватные шарики, салфетки, кожный антисептик, передник, маску, защитные очки, перчатки, пробирки с непромокаемыми пробками в штативе; резиновый жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не

позавтракал ли пациент.

2. Напишите направление в лабораторию, пронумеруйте пробирку.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком (см. стандарт).

5. Наденьте перчатки (ем. стандарт), маску, защитные очки, передник.

6. Соберите шприц однократного применения (см. стандарт).

7. Подложите под локоть пациента клеенчатую подушечку.

8. Наложите резиновый жгут на среднюю треть плеча на салфетку или на нательное белье.

9. Завяжите жгут так, чтобы свободные концы были направлены вверх, а петля вниз.

10. Прощупайте пульс на лучевой артерии ( пульс должен быть сохранен).

11. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

12. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

13. Обработайте перчатки кожным антисептиком.

14. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными в кожном антисептике. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

15. Возьмите шприц в правую руку: II палец на канюле иглы, а III, IV пальцы

охватывают цилиндр сверху, I палец снизу.

16. Зафиксируйте вену ниже предполагаемого места прокола большим пальцем левой руки.

17. Снимите колпачок с иглы и пунктируйте вену, как обычно ( кулак пациента при этом сжат).

18. Потяните поршень на себя, убедитесь, что игла в вене.

19. Наберите в шприц 5-7 мл крови, левой рукой медленно оттягивая поршень на

себя.

20. Снимите жгут, кулак пациент должен разжать, быстрым движением извлеките иглу из вены.

21. Приложите ватный шарик с кожным антисептиком на место инъекции на 3-5 минуг, попросив пациента слегка согнуть руку в локтевом суставе.

22. Снимите иглу со шприца, поместите в КБСУ.

23. Выпустите кровь из шприца медленно без напора в пробирку по стенке, не допуская ее разбрызгивания.

24. Закройте пробирку непромокаемой пробкой.

25. Пробирку с кровью вместе со штативом поставьте в контейнер, плотно закройте его.

26. Помогите пациен ту вст ать или занять комфортное положение.

27. Убедитесь, что кровь не выделяется из места прокола вены, возьмите у пациента ватный шарик и поместите его в КБСУ.

28. Отправьте контейнер и направление в биохимическую лабораторию.

29. Снимите перчатки, поместите в КБСУ.

30. Вымойте и осушите руки.

Примечание:

забор крови из вены на биохимический анализ проводится утром натощак в количестве 10 мл;

забор крови.на ВИЧ и производят в любое время дня в количестве 5

мл;

– пробирка для забора крови должна быть сухой (иначе наступает гемолиз эритроцитов), химически чистой, иметь притертую резиновую пробку; запрещается проводить забор крови без шприца – только иглой (имеется опасность разбрызгивания крови);

– в направлении укажите номер пробирки, цель исследования. Ф И О, пол, возраст пациента, диагноз, отделение;

наличие безопасной системы забора крови вакутайнер (ВО УАСиГАІЫЕК) создает максимальную защиту медперсонала, обеспечивает качество забираемого материала

ЗАБОР ВЕНОЗНОЙ КРОВИ С ПОМОЩЬЮ ВАКУУМНОЙ

СИСТЕМЫ

Вакуумная система забора крови – это безопасная система забора, транспортировки и качественного анализа образцов крови. Вакутайнер – полностью закрытая вакуумная пластиковая одноразовая система для взятия крови из вены.

Состоит из трех компонентов:

1. Двусторонней иглы с клапаном безопасности.

2. Одноразового держателя.

3. Стерильных пробирок с определенным объемом вакуума.

Преимущества: безопасность, эффективность, гарантия целостности образца и воспроизводимости исследования, минимум гемолиза, минимум микросгустков, время между забором образца и его контактом с добавкой постоянное; точность соотношения объемов кровь/добавка; минимальный эффект жгута, стерильность образца.

Цель: диагностическая.

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба, предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: двустороннюю иглу с клапаном безопасности, одноразовый держатель, вакуумные пробирки, ватные шарики, перчатки, лоток, кожный антисептик, жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, маску, передник, защитные очки или экран, контейнер для транспортировки пробирок, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не позавтракал ли пациент.

2. Напишите направление в лабораторию.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком.

5. Наденьте маску и перчатки, защитные очки, передник.

6. Возьмите систему для сбора крови.

7. Проверьте герметичность упаковки и срок годности основных компонентов забора крови.

8. Вскройте упаковку.

9. Возьмите иглу, снимите защитный колпачок (при использовании 2-х сторонней иглы – снять серый защитный колпачок).

10. Вставьте иглу в иглодержатель, завинтите до упора.

11. Усадите или уложите пациента, освободив верхнюю конечность от одежды, подложив под локоть подушечку и опустив руку вниз.

12. Наложите венозную манжетку (жгут) на среднюю треть плеча на нательное белье или салфетку.

13. Прощупайте пульс на лучевой артерии (пульс должен быть сохранен).

14. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

15. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

16. Обработайте кожным антисептиком перчатки.

17. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными кожным антисептиком, сбросьте в КБСУ. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

18. Возьмите систему в правую руку.

19. Зафиксируйте вену ниже предполаг аемого места прокола большим пальцем левой руки.

20. Держите иглу и иглодержатель под углом 15° по отношению к руке пациента. і Введите иглу, продвигая ее по току крови на 1- 1,5 см.

21. Переложите иглодержатель в левую руку, а правой рукой вставьте пробирку в > иглодержатель до упора и обеспечьте поступление крови.

22. При поступлении крови в стерильную пробирку снимите жгут.

23. Извлеките из держателя пробирку с полученным образцом крови.

24. Перемешайте содержимое пробирки, переворачивая ее 8 – 10 раз, но невстряхивайте.

25. Вставьте в держатель следующую пробирку, при необходимости забора крови I на другие исследования.

26. Поставьте пробирку в контейнер для транспортировки крови.

27. Приложите стерильный ватный шарик к месту венепункции, извлеките иглу из г вены и снимите с иглодержателя.

28. Прижмите стерильный шарик к месту венепункции и предложите пациенту согнуть руку в локтевом суставе и подержать его 3-5 минут.

29. Промаркируйте пробирки.

30. Зарегистрируйте данные в журнале забора крови на исследование и отправьте

кровь в вакуумной пробирке в контейнере вместе с направлением в

лабораторию.

31. Снимите средства защиты и поместите в КБСУ.

32. Вымойте и осушите руки.

Примечание: введение пробирки в иглодержатель до упора обеспечивает поступление крови, т.к. игла прокалывает резиновую мембрану и заглушку крышки пробирки. Кровь проходит в пробирку, пока не компенсирует созданный вакуум. Непоступление крови – показатель прокола вены насквозь, в этих случаях необходимо потянуть иглу (не извлекая) пока кровь не поступит в пробирку.

При извлечении пробирки из иглодержателя резиновая мембрана приходит в Исходное положение, перекрывает ток крови по игле. При необходимости используют различные пробирки в зависимости от назначенных врачом тестов.